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酵母相關(guān)
酵母轉(zhuǎn)化
L7278-100T/500T酵母菌落PCR試劑盒(堿裂解法)
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產(chǎn)品分類品牌 | LABLEAD | 貨號 | L7278 |
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供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 應用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
酵母菌落PCR試劑盒(堿裂解法)
貨號:L7278
儲存條件:
-20oC保存,至少一年有效。
Yeast Lysis Buffer和Neutralization Buffer可以室溫或4oC保存,至少一年有效。
Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)盡量避免反復凍融。
產(chǎn)品組分:
組分 | 100T | 500T |
A. Yeast Lysis Buffer | 1.1ml | 5.5ml |
B. Neutralization Buffer | 1.1ml | 5.5ml |
C. Yeast Colony PCR Mix (Red, 2x) | 1ml | 1ml*5 |
產(chǎn)品描述
蘭博利德生產(chǎn)的酵母菌落PCR試劑盒(堿裂解法)是一種非常便捷的用于釀酒酵母、畢赤酵母等菌株在質(zhì)粒轉(zhuǎn)化后陽性克隆菌落的PCR篩選和鑒定的試劑盒。本試劑盒提供了Yeast Lysis Buffer用于破壞酵母細胞壁,并提供了Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)用于進行PCR擴增。Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)是含有紫紅色和黃色染料(電泳位置分別約2.5kb和10bp)的2倍濃度的PCR預混液,含有2X Taq DNA Polymerase、2X PCR Buffer、2X dNTP和2X Loading Buffer等,用戶只需加入酵母菌落裂解液、引物和水即可進行PCR擴增,并且擴增完畢后可以直接上樣電泳。同時提供了Yeast Lysis Buffer在PCR反應前對酵母進行有效預處理,可以充分釋放酵母DNA,能確保有效進行酵母菌落PCR,從而大大縮短酵母轉(zhuǎn)化后陽性克隆鑒定的時間,提高實驗效率。
酵母細胞的細胞壁主要成分為多糖(85%-90%)和蛋白質(zhì)(10%-15%),其中多糖是由甘露聚糖、β-葡聚糖和少量的幾丁質(zhì)等組成,處于細胞壁內(nèi)層的β-葡聚糖與幾丁質(zhì)共價相連,起到細胞骨架的作用;而外層的甘露聚糖與中層蛋白質(zhì)中的絲*酸或蘇*酸以O-糖苷鍵相連接,形成的甘露糖蛋白覆蓋于細胞表面,給予酵母細胞一定的韌性。酵母細胞壁*特的結(jié)構(gòu)致使其DNA難以被簡單的PCR加熱過程所釋放,導致很多將酵母直接作為模板進行PCR檢測的試劑盒成功率都比較低。
本試劑盒使用非常便捷。本試劑盒中提供的Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)已經(jīng)含有所有的通用組分,用戶只需自備引物和水即可對酵母菌落進行PCR擴增。它大大簡化了PCR操作,使操作更加快捷,也減少了PCR操作過程中可能導致的污染;同時Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)中已經(jīng)包含了上樣緩沖液組分,PCR擴增結(jié)束后即可直接上樣電泳,無需添加上樣緩沖液。
本試劑盒中提供了雙色染料,便于電泳時觀察電泳進程。本試劑盒中的Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X)加入了紫紅色和黃色的電泳示蹤染料(整體呈現(xiàn)紅色),其在濃度為1%瓊脂糖膠中的遷移位置分別大約位于2.5kb和10bp處。PCR結(jié)束后可直接進行電泳檢測,無需再添加上樣緩沖液。紫紅色和黃色示蹤染料不會影響對相應DNA條帶的觀察和檢測。
使用方法:
1. 酵母菌落的裂解
a. 準備PCR管(例如蘭博利德生產(chǎn)的PCRG-1G 0.2ml優(yōu)級PCR單管 ),每管中加入10μl Yeast Lysis Buffer。
b. 用無菌吸頭挑取0.2-1mm酵母單克隆至含10μl Yeast Lysis Buffer的PCR管中,吹打混勻或Vortex混勻,低速離心數(shù)秒使液體聚集在管底。同時對于該菌落進行標記或同時接種該菌落到液體培養(yǎng)基或新的平板上。
注:菌體過多可能會影響Yeast Lysis Buffer對酵母的裂解并影響后續(xù)PCR反應,菌體量通常不宜超過約2μl。
c. 在PCR儀上95oC加熱5分鐘,以充分釋放酵母的DNA。
d. 加入10μl Neutralization Buffer,混勻,后續(xù)即可作為DNA模板用于PCR檢測。
2. 酵母菌落PCR反應體系的設置:
a. 室溫融解Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X),上下顛倒輕輕混勻后低速離心數(shù)秒。
b. 參考下表在冰浴上設置PCR反應體系:
試劑 | 使用量 | 最終濃度 |
Ultrapure water | 7.4μl | - |
Primer mix (5μM each) | 1.6μl | 0.4μM each |
Yeast Colony PCR Mix (Red, 2X) | 10 μl | 1X |
Total volume | 19 μl | - |
注:通常引物的終濃度為0.2μM時可獲得良好的檢測效果,也可以根據(jù)情況在0.1-1.0μM范圍內(nèi)調(diào)整引物的終濃度。擴增效率不高的情況下,可提高引物的濃度;發(fā)生非特異性反應時,可降低引物濃度。超純水可以選購D0055WJ(Lablead DNase/RNase-Free, Sterile Water)。
c. 吸取步驟1d準備好的DNA模板1μl至配制好的19μl PCR反應體系中,輕輕吹打混勻或輕微Vortex混勻,室溫低速離心數(shù)秒,使液體聚集在管底。
d. 如果所使用的PCR儀有熱蓋則省略本步驟。如果PCR儀沒有熱蓋,則在管內(nèi)滴入一滴石蠟油(M8410 Mineral oil)。
e. 把設置好的PCR反應管置于PCR儀上,開始PCR反應。
3. PCR反應參數(shù)的設置可以參考如下示例:
Step1(起始變性): 94oC 3min;Step2(變性): 94oC 30sec;Step3(退火): 55oC 30sec
Step4(延伸): 72oC 1min/kb;Step5(循環(huán)): Go To Step2 for 30 cycles;Step6(最終延伸): 72oC 10min
Step7(臨時保存): 4oC forever
注1:PCR反應的設置需根據(jù)模板、引物、PCR產(chǎn)物的長度和GC含量等條件的不同,設定不同的PCR反應條件包括溫度、時間和循環(huán)數(shù)等。
注2:Step4(延伸)的時間設置需根據(jù)PCR產(chǎn)物的長度進行設置,通常每kb產(chǎn)物的延伸時間為1分鐘。例如PCR產(chǎn)物的長度為1kb,則延伸時間可以設置為1分鐘,PCR產(chǎn)物的長度為2kb,則延伸時間可以設置為2分鐘,以此類推。
注3:對于初次進行的PCR,為盡量確??梢詳U增出預期的PCR產(chǎn)物,可以把循環(huán)數(shù)設置為35。對于需進行半定量或定量的PCR反應循環(huán)數(shù)一定要進行適當優(yōu)化,使PCR反應沒有達到平臺期。
4. 結(jié)果檢測
PCR結(jié)束后直接取5-10μl進行電泳檢測,無需添加上樣緩沖液。
注意事項:
①酵母菌落較難裂解,裂解時請注意吹打混勻或Vortex震蕩混勻。
②由于PCR反應非常靈敏,可使目的基因擴增超過1000萬倍,在設置PCR反應時請注意避免微量待擴增DNA的污染,并盡量考慮設置不加模板的空白對照以確認是否有待擴增DNA的污染。
③避免反復凍融本產(chǎn)品,多次反復凍融可能使產(chǎn)品性能下降。
④使用本產(chǎn)品前,一定要完*融化,并上下顛倒輕輕混勻后才能使用,并盡量避免產(chǎn)生氣泡。
⑤超純水推薦選購D0055WJ(Lablead DNase/RNase-Free, Sterile Water)。
⑥本產(chǎn)品僅限于專業(yè)人員的科學研究用,不得用于臨床診斷或治療,不得用于食品或藥品,不得存放于普通住宅內(nèi)。
⑦為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
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